Статья опубликована в рамках: IV Международной научно-практической конференции «Научные достижения биологии, химии, физики» (Россия, г. Новосибирск, 01 февраля 2012 г.)
Наука: Биология
Секция: Токсикология
Скачать книгу(-и): Сборник статей конференции
- Условия публикаций
- Все статьи конференции
дипломов
ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ОЦЕНКА ТОКСИЧНОСТИ КОРМА, ПОРАЖЁННОГО TILLETIA CARIES
Проблема микотоксикозов является актуальной во всём мире. Ежегодные потери в животноводстве причиняют колоссальный ущерб [3]. Попадая в организм, главным образом алиментарным путём, микотоксины негативно влияют на организм животных, снижая продуктивность, качество получаемой продукции, увеличивая экономические издержки, и представляют угрозу для здоровья человека и животных. В Омской области большой вред посевам пшеницы наносят головневые заболевания [5]. Наиболее часто встречающимся является возбудитель твердой головни Tilletia caries. В настоящее время, несмотря на успехи в разработке сельскохозяйственных защитных мероприятий против грибов, поражение твёрдой головнёй часто регистрируется, так как большинство хозяйств не проводят химическую обработку семян [4].
Цель настоящего исследования — установить изменения в организме лабораторных животных при введении в рацион корма, поражённого T.caries.
Материал и методы исследования. До начала опыта определяли содержание спор головнёвых грибов в корме. Для этого их отмывали от зерна. Содержание спор в процентах вычисляли по формуле: X=(m1-m2)×2, где m1 - масса фильтра после фильтрации, г., m2 - масса фильтра до фильтрации, г [2].
Для определения общей токсичности провели тестирование на суточной культуре стилонихий, находящихся в фазе активного роста. Предварительно пробы корма просеивали и измельчали. Навеску помещали в пробирку и заливали 1 % раствором ацетона. Подсчёт проводили через 1 и 3 часа. Выживаемость стилонихий определяли по формуле: N2/N1∙100 %, где N2 – количество стилонихий в конце опыта, шт.; N1 - количество стилонихий в начале опыта, шт. [1].
Биопроба была проведена на белых беспородных крысах (2 группы по 3 животных в каждой). Животных содержали в стандартных условиях вивария. В течение 14 дней их кормили пшеницей разного качества. В рацион опытной группы входило зерно, поражённое T.caries. Контрольная группа получала полноценную зерносмесь. Крыс выводили из эксперимента под эфирным наркозом.
Анализ лейкограммы проводили при окрашивании мазков по Романовскому-Гимза. Мазки исследовали под световом микроскопом при увеличении ×90. Гемоглобин определяли на колориметре КАМЦ-1, подсчёт эритроцитов вели в камере Горяева.
Биохимические исследования сыворотки крови выполняли на анализаторе Screen master LIHD 113 с применением тест-систем «Hospitex Diagnostics», при этом определяли содержание общего белка, глюкозы, альбуминов, глобулинов, мочевины и уровень щелочного резерва.
При статистической обработке вычисляли среднее арифметическое значение и ошибку среднего арифметического значения (M±m), достоверность различий - с использованием непараметрического критерия Mann-Whithey U test (STATISTICA 6.0).
Результаты исследования. При исследовании зерна пшеницы было установлено, что содержание спор головнёвых грибов в нём составляет 0,83 %, что значительно превышает допустимый уровень (0,1 %).
При определении интегральной токсичности корма учитывали требования ГОСТа: при 70—100 % выживаемости стилонихий - корм не токсичен, при 40—69 % - слаботоксичен, при 0—39 % - токсичный. При исследовании корма опытной группы выживаемость стилонихий составила 45—49 %, что указывает на слабую токсичность корма.
При проведении биопробы у животных обеих групп отмечали хорошую поедаемость корма. На всём протяжении исследований не выявлено заметных изменений в поведении и клинических признаков интоксикации, однако, время принятия бокового положения при эфирном наркозе у крыс контрольной группы составило в среднем 10 минут, у крыс опытной группы этот период сокращался до 7 минут. Масса крыс опытной группы (141,6±0,6) по окончании эксперимента была выше, чем у крыс контрольной группы (136,6±1,1), p<0,05.
При вскрытии у крыс опытной группы обнаружили увеличение объёма желудка вследствие большей наполненности кормом. Содержимое тонкого кишечника у контрольных животных имело зеленовато-коричневый цвет, у экспериментальных – серо-коричневый, что может свидетельствовать о нарушении процесса желчевыделения. У крыс опытной группы выражена дилатация двенадцатиперстной кишки, при этом слепая кишка переполнена содержимым, отмечаются признаки метеоризма, что является следствием усиления бродильных процессов и нарушения функции всасывания.
Печень крыс опытной группы гиперемирована, неравномерно окрашена, что связано с сосудистыми расстройствами и дистрофическими изменениями в гепатоцитах. Селезёнка также полнокровна, края её закруглены в отличие от животных контрольной группы.
Таблица 1. Содержание эритроцитов и гемоглобина в крови крыс
Номер п/п |
Контроль |
Опыт |
||
Эритроциты, ×1012/л |
Гемоглобин, г/л |
Эритроциты, ×1012/л |
Гемоглобин, г/л |
|
1 |
4,2 |
100 |
4,2 |
95 |
2 |
3,88 |
95 |
3,88 |
95 |
3 |
5,38 |
100 |
5,38 |
80 |
M±m |
3,54±0,45 |
98,33±1,67 |
4,49±0,46 |
90,0±5,0* |
Примечание: * – p<0,05
Таблица 2. Лейкограмма экспериментальных животных
Контроль |
Элементы крови |
Номер животного |
M±m |
||
1 |
2 |
3 |
|||
Лейкоциты ×109 /л |
6,48 |
6,45 |
6,55 |
6,49±0,03 |
|
Палочкоядерные, % |
3,6 |
1,3 |
3,8 |
2,9±0,8 |
|
Сегментоядерные, % |
10,7 |
8,2 |
15,4 |
11,43±2,11 |
|
Эозинофилы, % |
4,0 |
1,4 |
3,1 |
2,83±0,76 |
|
Моноциты, % |
0,0 |
0,0 |
0,0 |
0,0±0,0 |
|
Лимфоциты, % |
81,7 |
89,1 |
77,7 |
82,83±3,34 |
|
Опыт |
Лейкоциты ×109 /л |
7,55 |
7,75 |
7,60 |
7,63±0,06* |
Палочкоядерные, % |
0,0 |
0,0 |
1,0 |
0,33±0,33 |
|
Сегментоядерные, % |
17,0 |
18,6 |
21,0 |
18,86±1,16* |
|
Эозинофилы, % |
7,0 |
12,6 |
7,0 |
8,86±1,86 |
|
Моноциты, % |
4,0 |
0,0 |
1,0 |
1,67±1,21 |
|
Лимфоциты, % |
72,0 |
68,8 |
70,0 |
70,26±0,93* |
Примечание: * – p<0,05
Изменения в лейкограмме свидетельствуют об относительной нейтрофилии с увеличением процентного содержания сегментоядерных нейтрофилов на фоне общего лейкоцитоза и снижения доли лимфоцитов. Некоторые лимфоциты имели токсическую зернистость.
Таблица 3. Влияние поражённого T.caries и доброкачественного корма на биохимические показатели крови.
|
№ п/п |
Общ. белок, г/л |
Глюкоза, ммоль/л |
Альбумины, г/л |
Глобулины, г/л |
Мочевина, мг % |
Щелочной резерв, Об % СО2 |
Контроль |
1 |
83,1 |
5,7 |
324 |
507 |
5,1 |
687,2 |
2 |
70,2 |
5,9 |
370 |
332 |
4,8 |
719,7 |
|
3 |
75,1 |
5,1 |
391 |
360 |
4,7 |
710,4 |
|
M±m |
76,13 ± 3,76 |
5,56 ± 0,24 |
361,66 ±19,78 |
399,66 ±54,27 |
4,86 ±0,12 |
705,76 ± 9,66 |
|
Опыт |
4 |
85,5 |
7,1 |
378 |
477 |
5,8 |
838,8 |
5 |
76,4 |
7,3 |
399 |
365 |
5,5 |
801,7 |
|
6 |
77,7 |
8,0 |
365 |
412 |
5,4 |
811,4 |
|
M±m |
79,86 ± 2,84 |
7,46 ±0,27* |
380,66 ±9,91 |
418 ±32,47 |
5,56 ±0,12* |
817, 3 ± 11,12* |
Примечание: * – p<0,05
Не отмечено торможения белоксинтезирующей функции печени. Имеет место тенденция к гипергликемии, что может быть связано с повышением потребности в углеводах и носит компенсаторный характер. Кроме того, регистрировали увеличение содержания мочевины, что, вероятно, стало результатом активации глюконеогенеза, в результате чего от белков отщепляется аммиак, который обезвреживается в мочевину. Возрастание щелочного резерва можно объяснить увеличением концентрации аммиака.
Таким образом, результаты исследований свидетельствуют о потенциальной опасности поражения кормов головнёвыми грибами. В организме лабораторных животных в результате введения в рацион пшеницы, поражённой T.caries, были отмечены существенные изменения в картине крови и внутренних органах. Данные исследования убеждают в необходимости строгого контроля качества кормов.
Список литературы:
1. ГОСТ Р52337-2005. Корма, комбикорма, комбикормовое сырьё. Методы определения общей токсичности. — М.: Изд-во стандартов, 2005. — 15 с.
2. ГОСТ 13496.11-74. Зерно. Метод определения содержания спор головнёвых грибов. — М.: Изд-во стандартов, 1975. — 2 с.
3. Иванов А. В. Микотоксикозы животных: (этиология, диагностика, лечение, профилактика) / А. В. Иванов, М. Я. Тремасов. — М.: Колос, 2008. — 140 с.
4. Левитин М. М. Грибные болезни зерновых культур / М. М. Левитин, С. Л. Тютерев // Защита и карантин растений. — 2003. — № 11. — С. 47.
5. Миронова Г. В. Биологические методы защиты яровой пшеницы от листовой инфекции / Г. В. Миронова // Вестн. Ом. гос. аграр. Ун-та. — 1998. — № 4. — С. 46—47.
дипломов
Оставить комментарий