Телефон: 8-800-350-22-65
WhatsApp: 8-800-350-22-65
Telegram: sibac
Прием заявок круглосуточно
График работы офиса: с 9.00 до 18.00 Нск (5.00 - 14.00 Мск)

Статья опубликована в рамках: XXV Международной научно-практической конференции «Инновации в науке» (Россия, г. Новосибирск, 07 октября 2013 г.)

Наука: Биология

Скачать книгу(-и): Сборник статей конференции

Библиографическое описание:
Горбунова Е.М., Шульгина Е.Н., Люсова Л.Р. [и др.] МЕТОД ПРОВЕРКИ НА ЦИТОТОКСИЧНОСТЬ ПОЛИМЕРНЫХ МАТЕРИАЛОВ МЕДИЦИНСКОГО НАЗНАЧЕНИЯ IN VITRO // Инновации в науке: сб. ст. по матер. XXV междунар. науч.-практ. конф. № 9(22). – Новосибирск: СибАК, 2013.
Проголосовать за статью
Дипломы участников
У данной статьи нет
дипломов
Статья опубликована в рамках:
 
Выходные данные сборника:

 

МЕТОД  ПРОВЕРКИ  НА  ЦИТОТОКСИЧНОСТЬ  ПОЛИМЕРНЫХ  МАТЕРИАЛОВ  МЕДИЦИНСКОГО  НАЗНАЧЕНИЯ  IN  VITRO

Горбунова  Евгения  Михайловна

магистрант  Московского  государственного  университета  тонких  химических  технологий  им.  М.В.  Ломоносова,  г.  Москва

E-mailmargo.rock@mail.ru

Шульгина  Елена  Николаевна

магистрант  Московского  государственного  университета  тонких  химических  технологий  им.  М.В.  Ломоносова,  г.  Москва

Люсова  Людмила  Ромуальдовна

проф.,  д-р  техн.  наук,  зав.  кафедрой  химии  и  технологии  переработки  эластомеров  Московского  государственного  университета  тонких  химических  технологий  им.  М.В.  Ломоносова,  г.  Москва

Колмычкова  Кира  Ивановна

науч.  сотр.,  Государственное  научное  учреждение  центр  экспериментальной  эмбриологии  и  репродуктивной  биотехнологии  Россельхозакадемии,  г.  Москва

E-mail:  kirruccha@rambler.ru

Косовский  Глеб  Юрьевич

канд.  мед.  наук  Государственное  научное  учреждение  центр  экспериментальной  эмбриологии  и  репродуктивной  биотехнологии  Россельхозакадемии,  г.  Москва

E-mailinfo@ceerb.ru

Косовская  Елена  Владимировна

ст.  науч.  сотр.,  Государственное  научное  учреждение  центр  экспериментальной  эмбриологии  и  репродуктивной  биотехнологии  Россельхозакадемии,  г.  Москва

E-mail: 

 

METHOD  OF  TESTING  THE  CYTOTOXICITY  OF  POLYMERIC  MATERIALS  FOR  MEDICAL  USE  IN  VITRO

Evgenia  Gorbunova

undergraduate  Moscow  State  University  of  Fine  Chemical  Technology  named  after  M.V.  Lomonosov,  Moscow

Elena  Shulgina

undergraduate  Moscow  State  University  of  Fine  Chemical  Technology  named  after  M.V.  Lomonosov,  Moscow

Ludmila  Lusova

prof.,  Dr.  Sc.  sciences  and  head.  Department  of  Chemistry  and  Processing  of  Elastomers  Moscow  State  University  of  Fine  Chemical  Technology  named  after  M.V.  Lomonosov,  Moscow

Kira  Kolmichkova

scientificet  al  Center  of  embryology  and  reproductive  biotechnology  of  the  Russian  of  agricultural  sciences,  Moscow

Gleb  Kosovskiy

candidatehoneyScience  Center  of  embryology  and  reproductive  biotechnology  of  the  Russian  of  agricultural  sciences,  Moscow

Elena  Kosovskia

art.  Scientific.  et  al.,Center  of  embryology  and  reproductive  biotechnology  of  the  Russian  of  agricultural  sciences,  Moscow


 


АННОТАЦИЯ


Статья  включает  в  себя  результаты  экспериментов  по  определению  цитотоксичности  эластомерных  материалов,  создаваемых  для  использования  в  медицине.  Был  проведён  сравнительный  анализ  данных,  полученных  на  культуральных  чашках  Петри  и  с  помощью  системы  для  клеточного  анализа  RTCA  iCELLigence.  Сделан  вывод  о  возможности  изготовления  изделий  на  основе  исследуемых  образцов.


ABSTRACT


The  article  contains  the  results  of  experiments  to  determine  the  cytotoxicity  of  elastomeric  materials  created  to  be  used  in  medicine.  Comparative  analysis  of  the  data  obtained  in  the  culture  Petri  dishes  using  the  system  for  cellular  analysis  RTCA  iCELLigence  was  carried  out.  It  was  concluded  that  it  is  possible  to  manufacture  products  based  on  the  test  samples.


 


Ключевые  слова:  цитотоксичность;  культуры  клеток;  урологические  катетеры.


Keywords:  cytotoxicity,  cell  culture,  urinary  catheters.


 


В  настоящее  время  огромную  роль  в  жизни  человека  играют  эластомерные  материалы,  применяемые  во  многих  отраслях.  На  их  основе  создаются  различные  изделия,  в  том  числе  —  используемые  в  медицине.  Примером  могут  служить  урологические  катетеры.  Эти  изделия  должны  находиться  в  непосредственном  контакте  с  тканями  человека,  не  изменяя  своих  свойств  и  не  повреждая  сами  ткани.


К  сожалению,  на  поверхности  урологических  катетеров  могут  образовываться  биоплёнки,  способствующие  развитию  катетер-ассоциированных  инфекций.  Для  борьбы  с  ними,  в  некоторых  случаях,  поверхность  катетеров  обрабатывают  специальными  антимикробными  веществами  или  выполняют  катетер  со  специальным  покрытием.  Данные  вещества  могут  оказывать  токсическое  воздействие  не  только  на  бактерии,  образующие  биоплёнку,  но  и  на  ткани  человека.  Однако  катетеры,  даже  при  долгосрочном  использовании,  должны  оставаться  биоинертными.  Таким  образом,  при  выборе  компонентов  материала  для  катетеров  очень  важным  параметром  является  их  цитотоксичность,  которую  необходимо  свести  к  минимуму.  До  того  как  данные  медицинские  изделия  будут  допущены  к  широкому  использованию,  им  необходимо  пройти  многочисленные  испытания  на  цитотоксичность  [2,  с.  406—407].


В  настоящее  время,  наиболее  эффективным  материалом  для  изготовления  медицинских  катетеров  считается  силикон. 


В  рамках  написания  дипломной  магистерской  работы  были  испытаны,  с  учётом  методики  исследования  цитотоксичности  медицинских  изделий  in  vitro  (ГОСТ  Р  ИСО  10993-5-2009  [1,  с.  1—15]),  следующие  оригинальные  образцы:


образец  1  —  силикон  с  добавлением  антибиотика;


образец  2  —  силикон  с  добавлением  антимикробного  вещества  в  виде  порошка;


образец  5  —  силикон  с  добавлением  антимикробного  вещества  в  виде  раствора.


Для  определения  токсического  воздействия  образцов  на  клетки  были  использованы  субкультивированные  после  размораживания  культуры:  фетальные  фибробласты  крупного  рогатого  скота  (ФФ  КРС)  и  мезенхимные  стволовые  клетки  костного  мозга  крыс  (МСК  КМ).  Размораживание,  культивирование,  субкультивирование  культур  клеток  проводилось  по  стандартным  протоколам.  Культивирование  проводилось  на  среде  DMEM/F12  c  добавление  глутамина  300  мг,  10  %  FBS  без  добавления  антибиотиков  и  антимикотиков.  Перед  испытанием  все  образцы  были  обработаны  УФ  в  течение  15  минут. 


Исследования  по  оценке  цитотоксичности  эластомерных  материалов  были  проведены  двумя  способами:  в  культуральных  чашках  Петри  и  с  помощью  системы  для  клеточного  анализа  в  режиме  реального  времени  RTCA  iCELLigence  производителя  ACEA  Biosciences.


Опытные  образцы  были  помещены  на  монослой  клеток  конфлюэнтностью  75—95  %  в  чашках  Петри.  Для  контроля  были  использованы  культуры  клеток  без  образцов.  После  24  часов  культивирования  клеток  вместе  с  образцами,  были  проведены  визуальная  оценка  и  фотодокументация  с  помощью  инвертированного  микроскопа  Nikon.  По  фотографиям  можно  визуально  оценить  влияние  материалов  на  культуры  клеток. 


На  рисунках  1  и  3  представлены  фотографии  монослоя  клеточных  культур  МСК  КМ  (рисунок  1)  и  ФФ  КРС  (рисунок  3).  Далее,  для  примера,  приведены  фотографии  монослоя  (рисунок  2  и  рисунок  4)  после  контакта  с  образцом  2  в  течение  24  часов.  Подобные  фотографии  были  получены  и  для  образца  1.  Образец  5  проявил  цитотоксический  эффект  в  той  же  мере  после  48  часов  контакта  с  культурами  клеток.  Это  говорит  о  более  медленном  выходе  антимикробного  вещества  из  эластомерного  материала  в  среду.  Таким  образом,  исходя  из  полученных  экспериментальных  данных,  можно  сделать  вывод,  что  образцы  1,  2,  5  в  той  или  иной  мере  оказывают  цитотоксическое  воздействие  как  на  культуру  клеток  ФФ  КРС,  так  и  на  МСК  КМ  крыс.  Было  отмечено,  что  образец  2  обладает  наибольшей  токсичностью  для  исследованных  культур  клеток.


 

IMG_5894

Рисунок  1.  МСК,  монослой,  который  не  был  подвергнут  каким-либо  воздействиям  (контроль)


 

IMG_5771

Рисунок  2.  МСК,  монослой,  контактировавший  с  образцом  2


 

IMG_5911

Рисунок  3.  ФФ  КРС,  монослой,  который  не  был  подвергнут  каким-либо  воздействиям  (контроль)


 

IMG_5777

Рисунок  4.  ФФ  КРС,  монослой,  контактировавший  с  образцом  2


 


В  дальнейшем  были  проведены  аналогичные  эксперименты  на  системе  для  клеточного  анализа  в  режиме  реального  времени  RTCA  iCELLigence  производителя  ACEA  Biosciences.  Для  исследования  был  выбран  протокол  Proliferation/Cytotoxicity,  таблица  1.


Таблица  1.

Протокол  исследования  Proliferation/Cytotoxicity

№  п/п

Продолжительность  операции,  мин

Число  экспериментальных  точек

Название  операции

1

1

1

Среда

2

240

240

Адгезия

3

1200

20

Пролиферация

4

240

240

Внесение  образца

5

4020

268

Пролиферация


 


После  завершения  эксперимента  были  получены  данные,  иллюстрирующие  поведение  культур  клеток  в  ходе  опыта.  С  помощью  этих  данных  была  построена  зависимость  клеточного  индекса  от  времени,  представленная  на  рисунок  5.


 

Рисунок  5.  Зависимость  клеточного  индекса  культур  клеток  ФФ  КРС  и  МСК  КМ  от  времени.  Кривые:  1  —  контроль;  2  —  образец  1;  3  —  образец  2;  4  —  образец  5


 


Используя  нормализованный  клеточный  индекс,  было  показано,  что  культуры  клеток  МСК  КМ  и  ФФКРС  в  лунках  до  токсического  воздействия  идентичны.  Различия  в  пролиферации  наблюдаются  только  после  внесения  образцов.  Результаты,  полученные  на  приборе,  соотносятся  с  данными  из  экспериментов  на  культуральных  чашках  Петри:  все  образцы  оказывают  цитотоксическое  воздействие  на  культуры  клеток.  Как  видно  из  рисунка  6,  образец  5  проявляет  цитотоксичность  в  первые  24  часа  после  внесения  в  лунку  с  культурой,  а  не  через  48,  как  это  было  в  первом  опыте.  Предположительно,  это  связано  с  меньшим  объёмом  среды  в  лунке  по  отношению  к  культуральным  чашкам  Петри.  Таким  образом,  достаточная  концентрация  антимикробного  вещества  достигается  в  более  короткие  сроки.


Следует  отметить,  что  более  выраженное  цитотоксическое  воздействие  материалы  оказывают  на  культуру  ФФ  КРС,  моделирующую  соединительную  ткань.  Полученные  данные  говорят  о  том,  что  опытные  образцы  не  подходят  для  создания  катетеров.  Экспериментальные  данные  свидетельствуют  о  цитотоксическом  влиянии  эластомерных  образцов,  связанном  с  концентрацией  антимикробных  веществ.  В  связи  с  чем,  использование  силикона  с  оптимально  подобранной  концентрацией  антимикробного  вещества,  представляется  перспективным. 


 


Список  литературы:


1.ГОСТ  Р  ИСО  10993-5-2009  Изделия  медицинские.  Оценка  биологического  действия  медицинских  изделий.  Часть  5.  Исследования  на  цитотоксичность:  методы  in  vitro.  —  Взамен  ГОСТ  Р  ИСО  10995.5-99;  Введ.  От  2.12.2009  —  16  с.


2.Культура  животных  клеток:  практическое  руководство/  Фрешни  Р.Я.;  пер.  с  5-го  англ.  издания  М.:  Бином.  Лаборатория  знаний,  2010  —  691  с. 

Проголосовать за статью
Дипломы участников
У данной статьи нет
дипломов

Оставить комментарий

Форма обратной связи о взаимодействии с сайтом
CAPTCHA
Этот вопрос задается для того, чтобы выяснить, являетесь ли Вы человеком или представляете из себя автоматическую спам-рассылку.